Liikkumaton CALB
CALB immobilisoidaan fysikaalisella adsorptiolla erittäin hydrofobiseen hartsiin, joka on makrohuokoinen styreeni/metakrylaattipolymeeri. Immobilisoitu CALB soveltuu käytettäväksi orgaanisissa liuottimissa ja liuotteettomissa järjestelmissä, ja sitä voidaan kierrättää ja käyttää uudelleen useita kertoja sopivissa olosuhteissa.
Tuotekoodi: SZ-CALB- IMMO100A, SZ-CALB- IMMO100B.
★Korkeampi aktiivisuus, korkeampi kiraalinen selektiivisyys ja korkeampi stabiilius.
★Parempi suorituskyky vedettömissä faaseissa.
★Helposti poistettavissa reaktiojärjestelmästä, reaktiot pysäytetään nopeasti ja vältetään proteiinijäämien muodostuminen tuotteeseen.
★Voidaan kierrättää ja käyttää uudelleen kustannusten alentamiseksi.
| Toiminta | ≥10000PLU/g |
| reaktion pH-alue | 5–9 |
| Reaktion lämpötila-alue | 10–60 ℃ |
| Ulkonäkö | CALB-IMMO100-A: Vaaleankeltainen tai ruskea kiinteä aine CALB-IMMO100-B: Valkoinen tai vaaleanruskea kiinteä aine |
| Hiukkaskoko | 300–500 μm |
| Kuivaushäviö 105 ℃:ssa | 0,5–3,0 % |
| Hartsi immobilisointiin | Makrohuokoinen styreeni/metakrylaattipolymeeri |
| Reaktioliuotin | Vesi, orgaaninen liuotin jne. tai ilman liuotinta. Joissakin orgaanisissa liuottimissa reaktioon voidaan lisätä 3 % vettä reaktion tehon parantamiseksi. |
| Hiukkaskoko | CALB-IMMO100-A: 200–800 μm CALB-IMMO100-B: 400–1200 μm |
Yksikön määritelmä: 1 yksikkö vastaa 1 μmol propyylilauraatin synteesiä minuutissa lauriinihaposta ja 1-propanolista 60 °C:ssa. Yllä mainitut CALB-IMMP100-A ja CALB-IMMO100-B vastaavat erikokoisia immobilisoituja kantajia.
1. Reaktorityyppi
Immobilisoitua entsyymiä voidaan käyttää sekä kattilareaktorissa että kiinteäpetireaktorissa. On tärkeää välttää ulkoisen voiman aiheuttamaa murskautumista syötön tai täytön aikana.
2. Reaktion pH, lämpötila ja liuotin
Immobilisoitu entsyymi tulee lisätä viimeisenä, muiden materiaalien lisäämisen ja liuottamisen jälkeen, ja pH-säätö on tehtävä.
Jos substraatin kulutus tai tuotteen muodostuminen johtaa pH-arvon muutokseen reaktion aikana, reaktiojärjestelmään on lisättävä riittävästi puskuria tai pH-arvoa on seurattava ja säädettävä reaktion aikana.
CALB:n lämpötilatoleranssialueella (alle 60 ℃) konversionopeus kasvoi lämpötilan noustessa. Käytännössä reaktiolämpötila tulisi valita substraatin tai tuotteen stabiilisuuden mukaan.
Yleensä esterihydrolyysireaktio soveltuu vesifaasisysteemissä, kun taas esterisynteesireaktio orgaanisessa faasisysteemissä. Orgaaninen liuotin voi olla etanoli, tetrahydrofuraani, n-heksaani, n-heptaani ja tolueeni tai sopiva seosliuotin. Joissakin orgaanisissa liuottimissa reaktioon voidaan lisätä 3 % vettä reaktion tehon parantamiseksi.
3. CALB:n uudelleenkäyttö ja käyttöikä
Sopivissa reaktio-olosuhteissa CALB voidaan ottaa talteen ja käyttää uudelleen, ja erityiset käyttöajat vaihtelevat eri projektien välillä.
Jos talteen otettua CALB-pulloa ei käytetä jatkuvasti uudelleen ja se on varastoitava talteenoton jälkeen, se on pestävä, kuivattava ja suljettava 2–8 ℃:ssa.
Jos reaktiotehokkuus heikkenee hieman useiden uudelleenkäyttökertojen jälkeen, CALB:ia voidaan lisätä asianmukaisesti ja käyttää edelleen. Jos reaktiotehokkuus heikkenee merkittävästi, se on vaihdettava.
Esimerkki 1 (aminolyysi)(1):
Esimerkki 2 (aminolyysi)(2):
Esimerkki 3 (Renkaanavautuvan polyesterin synteesi)(3):
Esimerkki 4 (Transesteröinti, hydroksyyliryhmän regioselektiivisyys)(4):
Esimerkki 5 (Transesteröinti, raseemisten alkoholien kineettinen resoluutio)(5):
Esimerkki 6 (Esteröinti, karboksyylihapon kineettinen erotus)(6):
Esimerkki 7 (esterolyysi, kineettinen resoluutio)(7):
Esimerkki 8 (Amidien hydrolyysi)(8):
Esimerkki 9 (Amiinien asylointi)(9):
Esimerkki 10 (Aza-Michael-additioreaktio)(10):
1. Chen S, Liu F, Zhang K ym. Tetrahedron Lett, 2016, 57: 5312-5314.
2. Olah M, Boros Z, anszky GH, et tal. Tetrahedron, 2016, 72: 7249-7255.
3. Nakaoki1 T, Mei Y, Miller LM ym. Ind. Biotechnol, 2005, 1(2):126-134.
4. Pawar SV, Yadav G DJ Ind. Eng. Chem, 2015, 31: 335-342.
5. Kamble MP, Shinde SD, Yadav G DJ Mol. Catal. B: Enzym, 2016, 132: 61-66.
6. Shinde SD, Yadav G D. Process Biochem, 2015, 50: 230–236.
7. Souza TC, Fonseca TS, Costa JA, ym. J. Mol. Catal. B: Enzym, 2016, 130: 58-69.
8. Gavil´an AT, Castillo E, L´opez-Mungu´AJ Mol. Catal. B: Enzym, 2006, 41: 136-140.
9. Joubioux FL, Henda YB, Bridiau N, et tal. J. Mol. Catal. B: Enzym, 2013, 85-86: 193-199.
10. Dhake KP, Tambade PJ, Singhal RS, et tal. Tetrahedron Lett, 2010, 51: 4455-4458.








